检测前准备

尿酸（UA）检测试剂盒的准确使用始于规范的前期准备，这直接影响检测结果的可靠性。

样本采集与处理

临床常用样本为血清、血浆或尿液，需根据试剂盒说明书选择适配样本类型。以血清样本为例，采集空腹静脉血后，应使用无抗凝剂真空管，避免溶血（红细胞破裂会释放尿酸酶，导致检测值偏低）。血液采集后需在2小时内离心（3000rpm，10分钟）分离血清，若无法立即检测，血清应冷藏（2-8℃）保存，保存时间不超过24小时；长期保存需冷冻（-20℃以下），避免反复冻融。尿液样本需收集新鲜中段尿，避免混入杂质，若需定量检测，应记录24小时尿量并充分混匀后取样。

试剂盒与仪器检查

使用前需检查试剂盒包装是否完好，确认未过有效期（通常试剂盒有效期为12-18个月，开封后应在说明书规定时间内使用，如2-8℃保存28天）。查看试剂组分（如酶试剂、校准品、缓冲液等）是否齐全，有无沉淀、变色或浑浊（正常应为澄清液体，出现沉淀可能因低温储存，可37℃水浴复溶后观察，若无法溶解则试剂失效）。同时准备配套仪器，如半自动生化分析仪、移液器（建议使用20-200μL可调量程，确保精度）、恒温水浴锅（控制孵育温度±0.5℃），使用前校准移液器，检查仪器波长是否与试剂盒要求一致（常见检测波长500-550nm）。

环境条件控制

操作需在洁净、无风的实验台进行，避免阳光直射（部分试剂对光敏感，如还原型辅酶Ⅰ易分解）。室温控制在15-30℃，湿度40%-60%，湿度过高可能导致试剂潮解，过低则可能使样本蒸发。

标准操作流程

遵循“样本-试剂反应-信号检测"的核心逻辑，按步骤执行以减少误差。

试剂准备

根据检测项目（如尿酸酶-过氧化物酶法），按说明书比例混合试剂。例如，将酶试剂与缓冲液按1:5比例稀释，轻柔颠倒混匀（避免剧烈震荡产生气泡，气泡会干扰比色），稀释后试剂需在室温平衡15分钟，确保反应温度稳定。若使用冻干校准品，需用专用复溶液溶解，静置10分钟使充分溶解，期间避免搅拌（防止蛋白变性）。

加样与孵育

取洁净反应管，依次加入校准品/样本和试剂。以200μL体系为例：加入5μL样本（或校准品），再加入195μL稀释后试剂，用移液器吹吸3次混匀（吹吸时避免接触管壁，防止液体残留）。将反应管放入37℃恒温水浴锅孵育10分钟（孵育时间需严格控制，时间不足会导致反应不-完-全-，过长可能引发副反应），期间避免晃动水浴锅。

信号检测

孵育结束后，立即将反应管放入生化分析仪或分光光度计，在规定波长下读取吸光度值。若手动检测，需以空白试剂（仅缓冲液+酶试剂）调零，确保每次检测前校准仪器零点。记录吸光度后，根据校准曲线计算样本尿酸浓度（部分试剂盒提供标准曲线方程，或通过校准品浓度与吸光度的线性关系推导）。

关键注意事项

操作细节直接影响结果准确性，需重点关注以下方面。

样本质量控制

溶血、脂血、黄疸样本会干扰检测：溶血样本中红细胞释放的腺苷酸代谢产物会增加尿酸检测值；脂血样本因乳糜微粒散射光，导致吸光度假性升高；黄疸样本中的胆红素会抑制过氧化物酶活性，使结果偏低。遇此类样本，应重新采集或使用具备抗干扰能力的试剂盒（需提前查看说明书抗干扰指标）。

试剂使用规范

不同批次试剂不可混用（批次间存在差异，可能导致校准偏差）。试剂开封后需按要求保存，如酶试剂需2-8℃冷藏，避免反复取出室温放置（温度波动会影响酶活性）。加样时需更换吸头，避免交叉污染（如校准品与样本间污染会导致结果漂移）。

操作时间管理

从样本离心到检测完成，建议在1小时内完成（尤其夏季室温较高时，样本中尿酸易分解）。若检测样本量较大，可分批次处理，避免试剂长时间暴露在室温中（酶试剂在30℃以上放置超过30分钟，活性可能下降10%以上）。

结果判读与报告

检测结果需结合参考范围与临床背景，避免单一数值解读。

参考范围确认

不同人群尿酸参考值存在差异：成人男性通常为208-428μmol/L，女性155-357μmol/L（绝经后接近男性），儿童119-327μmol/L。检测报告中需注明样本类型（血清/尿液）、检测方法（如尿酸酶法）及参考范围来源（如WS/T 404.2-2018《临床常用生化检验项目参考区间》）。

结果异常处理

若样本尿酸值超出参考范围，需排除操作误差（如试剂失效、加样错误），建议重新检测。若复测结果仍异常，结合临床症状（如关节疼痛、血尿），提示可能存在高尿酸血症或痛风风险，需建议进一步检查（如肾功能、尿常规）。