谷胱甘肽(GSH)是细胞内较重要的非酶抗氧化剂,由谷氨酸、半胱氨酸和甘氨酸组成(γ-谷氨酰-半胱氨酰-甘氨酸),通过提供还原性巯基(-SH)直接中和自由基(如过氧自由基ROO·),并参与维持细胞氧化还原平衡(如协助维生素C/E再生)。GSH检测试剂盒通过特异性检测还原型GSH(rGSH,具有生物活性)或总GSH(tGSH,rGSH+氧化型GSH=GSSG),成为研究氧化应激、药物毒性及营养干预效果的关键工具。
一、样本制备:
•血液样本:全血需立即加入抗坏血酸(1%final浓度)或DTT(二硫苏糖醇,5mM)作为还原剂,防止红细胞破裂后释放的GSH被空气氧化为GSSG;血清样本因不含细胞,可直接离心(3000rpm,10分钟)取上清,但需在采血后30分钟内处理(避免血清中残余血小板释放GSH)。
•组织样本:取新鲜组织(如肝脏、肾脏,约0.1-0.5g),迅速剪碎后加入预冷的PBS缓冲液(pH 7.4,含1mM EDTA抑制金属离子催化氧化),均质化后离心(12000rpm,15分钟,4℃),取上清液(total protein浓度建议1-5mg/mL);若检测tGSH,需额外加入N-乙基马来酰亚胺(NEM,10mM)封闭游离巯基,防止体外氧化。
•细胞样本:贴壁细胞用PBS轻洗2次,加入PBS(含1mM EDTA)刮取或用胰酶消化后离心(1000rpm,5分钟,4℃),PBS重悬后再次离心,弃上清后加入裂解液(含5mM DTT),冰上孵育10分钟裂解,超声波破碎(功率20%,30秒×3次),离心(15000rpm,10分钟,4℃)取上清。

二、试剂配制:
试剂盒通常包含衍生化试剂(如DTNB,5,5’-二硫代双(2-硝基苯甲酸),与GSH反应生成黄色2-硝基-5-硫代-2-硝基苯甲酸,5-硫代-2-硝基苯甲酸在412nm有吸收峰)、反应缓冲液(维持pH 8.0-8.5,促进反应)、标准品(已知浓度GSH,如0-100μM梯度)及封闭剂(如NEM)。使用时需现配现用——DTNB溶液避光保存(棕色瓶,4℃可存1周),缓冲液用去离子水新鲜配制(避免金属离子干扰),标准品用PBS稀释至工作浓度(如1-10μM,每点间隔2μM)。
三、数据处理:
•计算rGSH/tGSH浓度:根据标准曲线(吸光度值vs.GSH浓度,线性范围通常0-10μM,R²≥0.99),将样本吸光度代入回归方程,得到样本中GSH浓度(μM);若检测tGSH(含GSSG),需先用2-乙烯吡啶(VP)将GSSG转化为rGSH(反应15分钟),再检测总活性,通过差值计算GSSG含量(tGSH=rGSH+GSSG)。
•标准化到蛋白量/组织量:结果通常表示为nmol GSH/mg蛋白(用BCA法测定样本总蛋白浓度)或μmol GSH/g组织(用于整体样本分析),避免因取样量差异导致数据不可比。
•注意事项:若样本吸光度超出标准曲线范围,需稀释后重新检测;空白对照(试剂+缓冲液,无样本)的吸光度应<0.05(排除试剂本底干扰);重复检测3次取平均值(CV值≤10%为可靠数据)。
掌握GSH检测试剂盒的操作要点,不仅能精准量化细胞或组织的抗氧化储备(如肝组织rGSH正常含量约2-5nmol/mg蛋白),更能为氧化应激相关疾病的机制研究与干预策略提供可靠数据支撑。