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更新时间:2025-12-29
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LDH催化乳酸与丙酮酸之间的可逆转化,同时伴随辅酶I(NAD⁺/NADH)的氧化还原态变化。这是所有LDH检测方法的基石。关键反应式如下:
正向反应(丙酮酸 → 乳酸)
丙酮酸 + NADH + H⁺ ⇌ L⁻-乳酸 + NAD⁺
逆向反应(乳酸 → 丙酮酸)
L⁻-乳酸 + NAD⁺ ⇌ 丙酮酸 + NADH + H⁺
决定性差异:
多数试剂盒采用正向反应(丙酮酸还原)。NADH在340nm处有强吸收峰,其消耗量与LDH活性直接相关。监测340nm吸光度下降速率可精确计算酶活性(U/L)。此方法灵敏度高,干扰少。
基于NADH在340nm紫外光下的特异性吸收特性,构建检测体系:
反应启动:在含NADH、丙酮酸底物的缓冲液中加入样本(血清/细胞裂解液)。
酶促动力学:LDH催化丙酮酸还原为乳酸,同步消耗NADH。
信号捕获:分光光度计连续监测340nm吸光度下降速率(ΔA/min)。
活性计算:
LDH活性 (U/L) = (ΔA/min × 反应体系体积 × 1000) / (ε × 光径 × 样本体积)
ε为NADH摩尔消光系数(通常为6.22 L·mol⁻¹·cm⁻¹)
技术关键点:
温控精度:反应需在恒温(如37℃)进行,温度波动±0.1℃可导致结果偏差>2%。
初始线性期:仅反应开始后30-60秒内的线性吸光度变化反映真实酶活性。
商用试剂盒通过优化组分确保反应特异性与稳定性:
组分 | 核心作用 | 典型浓度 |
丙酮酸底物 | 提供酶促反应靶标,纯度需>95%以避免杂质酶干扰 | 0.6-1.2 mmol/L |
还原型NADH | 反应信号源,冻干粉需-20℃避光保存,复溶后4小时内使用 | 0.15-0.3 mmol/L |
Tris/HEPES缓冲液 | 维持pH 7.4±0.1,保障LDH最适活性环境 | 50-100 mmol/L |
稳定剂 | 含BSA或海藻糖,防止酶变性失活 | 0.1-1% (w/v) |
干扰排除设计:
样本预稀释:降低内源性丙酮酸/乳酸对反应平衡的影响。
抗凝剂选择:避免肝素(抑制LDH同工酶4/5),推荐血清或EDTA血浆。
误差源控制直接影响结果可靠性:
加样精度:
使用校准移液器(误差<1%),血清样本加样量通常为5-10μl。
混匀操作:
轻柔涡旋3秒,避免产生气泡(气泡散射光干扰340nm读数)。
延迟时间:
从样本加入至光度计启动监测需<15秒,防止预反应消耗底物。
临床警戒值示例:
成人血清LDH参考区间:125-220 U/L(37℃法)
>500 U/L提示心肌梗死、肝损伤或溶血可能;>1000 U/L需紧急排查恶性肿瘤。