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更新时间:2025-11-04
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        谷胱甘肽S转移酶标签(GST-Tag,26 kDa)与谷胱甘肽树脂的亲和力源于天然底物-酶相互作用:还原型谷胱甘肽(GSH)通过硫原子与GST的疏水口袋形成氢键网络,解离常数(Kd)低至10⁻⁷ M。这种高特异性使得一步纯化即可达到>90%纯度,但前提是树脂配基密度≥8 μmol GSH/mL凝胶,且载体为6%交联琼脂糖(如BMR2010),确保流速60 cm/h下背压<0.3 MPa。
裂解缓冲液:1% Triton X-100替代NP-40,避免A280背景升高;加入1 mM PMSF须在裂解后10 min内使用,否则半衰期缩短至30 min。
预处理:离心速度选择12,000×g×15 min,去除不溶物;上样前用0.45 μm过滤,防止树脂微球堵塞。
谷胱甘肽树脂平衡:5倍柱体积(CV)的PBS(pH 7.4)冲洗,电导率与样本差异<5%,避免“盐析"导致非特异吸附。
动态载量测试:将1 mg GST-GFP融合蛋白(分子量54 kDa)以0.5 mL/min加载至1 mL BMR2010柱,穿透10%时计算载量,实测值≥8 mg/mL(理论值10 mg/mL),差异源于标签折叠效率。
分段洗脱:5 mM GSH预洗脱去除弱结合蛋白,10 mM GSH洗脱目标蛋白,收集2 CV后切换至20 mM GSH确保全回收,避免“拖尾"导致稀释。
再生方案:3倍CV的6 M盐酸胍去除顽固吸附蛋白,随后用3倍CV的70%乙醇消毒,最后用10倍CV的PBS平衡至中性。盐酸胍处理次数≤20次,否则配基泄漏率从0.2%升至1.5%。
存储条件:20%乙醇中4℃保存,每3个月检测GSH配基密度(Ellman法),下降>15%需更换树脂。
高背压:检查样本黏度(≥5 cP时稀释2倍),或筛板堵塞(反向冲洗0.1 M NaOH)。
低回收率:标签未暴露(加入0.1% SDS温和变性),或GSH氧化(DTT终浓度1 mM还原)。
杂带污染:洗脱前用5倍CV的150 mM NaCl预洗,去除离子相互作用蛋白;若杂带为GST二聚体,在裂解缓冲液中加入1 mM EDTA抑制金属酶。
将BMR2010装入XK 16/20柱(柱高10 cm),连接ÄKTA系统,设置梯度洗脱(5-20 mM GSH,10 CV),结合Superdex 200 Increase在线脱盐,实现从菌体裂解到无标签蛋白仅需2.5 h,回收率提升至85%。